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口腔外科文章--磁导向甲氨蝶呤缓
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发表时间:2007-1-9 9:40:00
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摘 要:目的:探讨磁导向甲氨蝶呤缓释药物(fm-mtx)对舌癌细胞凋亡的诱导作用,了解新药fm-mtx治疗舌癌的作用机理。方法:选用不同剂量的fm-mtx与人舌鳞癌tca8113细胞系共同培养。按不同时间收集细胞悬液,并在透射电镜下观察细胞超微结构的变化。结果:细胞经fm-mtx药物处理组,1 h后,透射电镜下即可看到瘤细胞溶酶体大量增生,4 h后瘤细胞胞浆溶酶体开始吞噬磁性微粒,24 h吞噬颗粒明显增多,溶酶体膜开始裂解,颗粒释放到胞浆内。72 h后其内质网及线粒体内也可见颗粒沉积,溶酶体膜有消失现象,呈现胞浆空泡结构。96 h后部分瘤细胞出现凋亡。结论:甲氨蝶呤缓释药物(fm-mtx)对舌癌细胞凋亡起诱导作用,进入瘤细胞的细胞器,对肿瘤细胞有明显的杀伤作用。
细胞调亡(apoptpsis)是一种细胞生理性程序化死亡(programmed cell death),是当前肿瘤研究较活跃的领域。抗癌药物诱导肿瘤细胞发生凋亡,将成为肿瘤治疗的新焦点〔2,6〕。本文通过电镜及流式细胞术,分析了抗癌药物磁导向甲氨蝶呤缓释药fm-mtx对舌癌细胞凋亡的诱导作用,了解新药fm-mtx治疗舌癌的作用机理。
1 材料与方法
1.1 细胞系及细胞培养
人舌鳞癌细胞系tca8113细胞由上海第二医科大学口腔医学院建株,第四军医大学口腔医学院口腔生物学教研室提供。将细胞接种于含体积分数为15%小牛血清的rpmi1640(gibco)培养液中、37 ℃ 的体积分数为5% co2条件下培养。
1.2 fm-mtx进入瘤细胞后内在化过程超微结构观察
取生长旺盛的tca8113细胞消化传代,加rpmi1640培养液,制成细胞悬液,细胞计数调至1×105个/ml。传至中号培养瓶6瓶,培养24 h后,取5瓶,每瓶加入fm-mtx 100 μg/l,继续培养,分别于1 h,4 h,24 h,72 h,96 h收获细胞,离心(1000r/min,5 min),弃上清,用0.1 mol/l pbs(ph 7.4)洗3次,弃上清,向细胞沉定内加入体积分数φ为2.5%戊二醛溶液固定1周。10 g/l锇酸后固定2 h,系列乙醇脱水后入丙酮。epon812环氧树脂包埋。制备成超薄切片,铀-铅双染色,jem-2000ex透射电镜观察fm-mtx药物颗粒进入瘤细胞的内在化过程。
1.3 fm-mtx对细胞周期的影响
取对数生长的tca8113细胞,用2.5 g/l胰酶消化制成105个/ml的细胞悬液,传至中号培养瓶4瓶,继续培养24 h后,其中3瓶中分别加入fm-mtx 1000、100、10 μg/l,另一瓶不加药物作为对照组。在加热后第3 d收获细胞。各瓶细胞分别用2.5g/l胰酶消化5 min,使细胞尽可能分散成单个细胞。移入离心管中。离心(800r/min,5 min),弃上清,加预冷4 ℃ pbs 10 ml(ph7.4)吹打均匀,待细胞分散良好时,将其吹入预冷4 ℃的φ(乙醇)=70%中固定48 h,在fcm上检测细胞周期变化。对各组细胞大小、dna含量、细胞周期g1、s、g2各期细胞数分布比例进行测定,用multicycle软件分析并打印细胞周期分布状况〔3〕。
2 结 果
2.1 fm-mtx对瘤细胞内在化过程
在生长旺盛的tca8113细胞中加入fm-mtx药物,1 h后,透射电镜下可见瘤细胞内溶酶体大量增生,溶酶体内尚未见到fm颗粒的沉积(图1)。4 h后可见溶酶体内有吞噬的fm超微磁粒;瘤细胞内线粒体肿胀,糖原颗粒增多(图2)。24 h则见溶酶体明显增大,fm颗粒增多(图3)。48 h溶酶体膜裂解,胞浆内可见磁微粒(图4)。72 h粗面内质网及线粒体内均可见有磁微粒沉积,溶酶体膜消失,胞浆呈空泡结构(图5)。96 h出现凋亡细胞,核固缩,可见凋亡小体(图6)。
图1 瘤细胞内溶酶体大量增生(tem×3k)
图2 溶酶体内有吞噬的fm超微磁粒,线粒体肿胀,糖原颗粒增多(tem×30k)
图3 溶酶体明显增大,吞噬的fm颗粒增多(tem×60k)
图4 溶酶体膜裂解,胞浆内可见磁微粒(tem×60k)
图5 溶酶体膜消失,胞浆呈空泡结构(tem×30k)本新闻共2页,当前在第1页12
责任编辑:姚红祥
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